FAUST-TEKNIK: FUNDAMENT OCH MATERIAL, STEG, FÖRDELAR, NACKDELAR - MEDICIN - 2026

Den Faust-tekniken är en metod som gör att koncentrationen av vissa ägg och / eller larver av parasiter som finns i avföringen genom att sväva. Det används när direkta koproparasitologiska tester är negativa eller när du vill få rena prover utan detritus.

Koncentrationsmetoder för koproparasitologiska undersökningar är av tre typer: genom flotation, genom sedimentation eller med metoder som kombinerar de två föregående. Dessa metoder ökar chansen för positiva resultat.

Avföringsanalys.

Faust-metoden består av att blanda en del av avföringsprovet med ett ämne som är tätare än de ägg eller parasiter som ska koncentreras. Detta orsakar att de är mindre täta och flyter på ytan. Supernatantvätskan uppsamlas och ses under ett mikroskop för identifiering och kvantifiering.

Denna metod används för att visualisera helminthägg. Samtidigt har det visat sig vara en mycket känslig metod för diagnos av Giardia lamblia, en flagellerad protosoan som är utbredd över hela världen. Flotationsmetoder rekommenderas inte för mycket tunga parasitägg som bandmaskar och trematoder.

Parasiter är en av de mest utbredda tarminfektioner världen över, särskilt i fattiga länder med dåliga sanitära åtgärder. Av detta skäl är det mycket användbart för diagnos och behandling att ha känsliga metoder för att identifiera och kvantifiera dessa parasiter.

Stiftelse och material

Tekniken är baserad på förekomsten av olika specifika tyngdkrafter hos ägg, parasiter, cyster, larver och detritus, med användning av zinksulfatlösningar som en flotationsmetod.

Grunden för tekniken är att blanda provet med en zinksulfatlösning som har en högre densitet än lättare ägg, larver eller parasiter.

Detta gör att de tyngre elementen kan fällas ut och de lättare flyter som förekommer i supernatanten efter centrifugering av proverna.

material

Behållare för insamling av avföringsprover (Källa: Bobjgalindo via Wikimedia Commons)

- Bered en zinksulfatlösning med en densitet av 1,18 eller 1,2 g / ml om provet behandlades tidigare.

- Förbered ett rack med tidigare märkta provrör.

- Ha en centrifugalmaskin.

- Ha mikroskopglas och täckglas till hands. Alla måste märkas

- Se till att en Lugols lösning är tillgänglig för att färga lakan.

- Ha gasväv för att filtrera.

- Ha trattar och destillerat vatten.

- Hitta märkta plast- eller kartongbehållare.

- Även applikatorer och sterilt handtag på 5 mm.

- En tändare för att sterilisera handtaget.

Steg

Makroskopisk och mikroskopisk undersökning

För varje avföringsundersökning börjar undersökningen med det som kallas "grovt undersökning" av proverna.

Konsistensen, färgen, närvaron av vad som verkar vara blod, närvaron av slem och närvaron av vuxna parasiter beskrivs.

Sedan fortsätter vi till "mikroskopisk undersökning" av avföringen, detta beror på metoden. Den enklaste är metoden direkt smet, som är den enklaste mikroskopiska metoden för parasiter.

Fotografi av observationen av Gardia lamblia, en tarmparasit (Källa: Riddlemaster via Wikimedia Commons)

Förfarandet innebär att en liten mängd av provet placeras direkt på en bild. Placera flera droppar saltlösning som borde ha samma storlek som provet. Blanda saltlösningen med avföringen tills en homogen blandning bildas. Placera ett täckglas och undersöka under mikroskopet.

Original Faust-teknik

Den andra proceduren består av Faust float-metoden vars ursprungliga version består av:

1- Placera cirka två gram avföring i en lämplig behållare för detta ändamål.

2- Tillsätt 30 ml zinksulfatflotationslösning med vilken en emulsion görs genom att blanda lösningen med avföringen.

3- Sil med en sil i en andra behållare och överför till provröret.

4- Tillsätt mer flotationslösning tills en menisk bildas i röret.

5- Lägg ett glasskydd på menisken. Låt den vila i 10 till 15 minuter.

6- Ta bort täckglaset och placera det på ett objektglas, som kommer att undersökas under ett mikroskop.

Faust-teknik genom centrifugering

Ursprungligen använde metoden inte centrifugering, men det ingår nu eftersom bättre resultat erhålls. Tekniken innefattar en serie steg för att uppnå ett korrekt förfarande, dessa är som följer:

1- Avföringen tvättas med vatten, blandas väl och filtreras sedan med gasväv vikta i fyra. Provet placeras i ett provrör.

2- Centrifugera och ta bort supernatanten (prover som hålls över vatten). Steg 1 och 2 upprepas tills supernatanten är "klar".

3- Zinksulfat tillsätts till det filtrerade och centrifugerade provet.

4- Det blandas väl.

5- Centrifugera igen i 1 minut vid 2500 rpm (varv per minut).

6- Supernatanten utvinns med en steril slinga på cirka 5 mm; rören ska inte skakas.

7- Provet som utvinns från supernatanten placeras på ett objektglas och en droppe Lugol kan placeras för att färga, täckglaset placeras och observeras under ett mikroskop.

8- Behållarna och provrören är märkta.

Fördel

- Elementen som används för diagnosen kan ses rena och utan ”detritus”, vilket underlättar observationen av arket och minskar tiden som används för diagnosen.

- I supernatanten återvinns både larver, ägg och / eller cyster.

- Det är en mycket låg kostnadsmetod.

- Förfarandet är mycket enkelt och enkelt att genomföra.

- Diagnosen är snabb och korrekt.

- På grund av vikten och hög förekomsten av parasitos i fattiga länder är dessa billiga och lättanvända metoder idealiska för diagnos och övervakning av dessa patologier.

nackdelar

Flotationslösningens densitet ger en sammandragning av larverna, det vill säga de krymper och kan på mycket kort tid deformeras. Detta tvingar undersökaren att ställa diagnosen omedelbart och de behandlade proverna kan inte hållas för framtida undersökningar.

Som med alla mikroskopiska identifieringsmetoder krävs en mycket erfaren undersökningspersonal för att göra noggranna diagnoser.

Den snabba deformationen av de element som är nödvändiga för diagnosen, även om de är en uppenbar nackdel, kan korrigeras genom att göra omedelbara mikroskopiska observationer.

referenser

1. Ananias, FL (2017). Utvärdering av känsligheten hos Faust-metoden och spontan sedimentation för diagnos av giardiasis. Cuban Journal of Tropical Medicine, 68 (2).
2. Bartlett, MS, Harper, K., Smith, N., Verbanac, P., & Smith, JW (1978). Jämförande utvärdering av en modifierad zinksulfatflotationsteknik. Journal of clinical microbiology, 7 (6), 524-528.
3. Becker, AC, Kraemer, A., Epe, C., & Strube, C. (2016). Känslighet och effektivitet för utvalda koproskopiska metoder - sedimentation, kombinerad zinksulfat sedimentation-flotation och McMaster-metoden. Parasitology research, 115 (7), 2581-2587.
4. Garcia, LS, Arrowood, M., Kokoskin, E., Paltridge, GP, Pillai, DR, Procop, GW, … & Visvesvara, G. (2018). Laboratoriediagnos av parasiter från mag-tarmkanalen. Översikt av klinisk mikrobiologi, 31 (1), e00025-17.
5. Summers, WA (1942). En modifiering av zinksulfatcentrifugalflotationsmetod för utvinning av helminth ägg i formaliniserad avföring. Journal of Parasitology, 28 (4), 345-346.